{"product_id":"himedia-baird-parker-agar-base-m043-500g","title":"HiMedia - Baird Parker Agar Base (M043-500G) ","description":"\u003cdiv class=\"box-inner1\"\u003e\n\n\u003cdiv class=\"product attribute overview\"\u003e\n\n\u003cdiv class=\"sku-block\"\u003e\n\n \u003cdiv class=\"value\" itemprop=\"description\"\u003eEmpfohlen zur Isolierung und Zählung von koagulasepositiven Staphylokokken aus Lebensmitteln und klinischen Proben. \u003c\/div\u003e\n\n\u003cdiv class=\"value\" itemprop=\"description\"\u003e\u003c\/div\u003e\n\n\u003cdiv class=\"value\" itemprop=\"description\"\u003e\n\n\u003cdiv class=\"section\"\u003e\n\n\u003ch3\u003eBestimmungsgemäße Verwendung\u003c\/h3\u003e\n\n\u003cp\u003e Empfohlen zur Isolierung und Zählung von koagulasepositiven Staphylokokken aus Lebensmitteln und klinischen Proben.\u003c\/p\u003e\n\n\n\u003c\/div\u003e\n\n\u003cdiv class=\"section\"\u003e\n\n\u003ch3\u003e Zusammensetzung**\u003c\/h3\u003e\n\n\u003ctable\u003e\n\n\u003ctbody\u003e\n\n\u003ctr\u003e\n\n\u003cth\u003e Zutaten\u003c\/th\u003e\n\n\u003cth\u003e g\/L\u003c\/th\u003e\n\n\n\u003c\/tr\u003e\n\n\u003ctr\u003e\n\n\u003ctd\u003e Trypton\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e 10.000\u003c\/td\u003e\n\n\n\u003c\/tr\u003e\n\n\u003ctr\u003e\n\n\u003ctd\u003e HM Pepton B#\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e 5.000\u003c\/td\u003e\n\n\n\u003c\/tr\u003e\n\n\u003ctr\u003e\n\n\u003ctd\u003e Hefeextrakt\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e 1.000\u003c\/td\u003e\n\n\n\u003c\/tr\u003e\n\n\u003ctr\u003e\n\n\u003ctd\u003e Glycin\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e 12.000\u003c\/td\u003e\n\n\n\u003c\/tr\u003e\n\n\u003ctr\u003e\n\n\u003ctd\u003e Natriumpuruvat\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e 10.000\u003c\/td\u003e\n\n\n\u003c\/tr\u003e\n\n\u003ctr\u003e\n\n\u003ctd\u003e Lithiumchlorid\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e 5.000\u003c\/td\u003e\n\n\n\u003c\/tr\u003e\n\n\u003ctr\u003e\n\n\u003ctd\u003e Agar\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e 20.000\u003c\/td\u003e\n\n\n\u003c\/tr\u003e\n\n\n\u003c\/tbody\u003e\n\n\n\u003c\/table\u003e\n\n\u003cp\u003e \u003cb\u003eEndgültiger pH-Wert (bei 25 °C):\u003c\/b\u003e\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003e7,0±0,2\u003c\/p\u003e\n\n\u003cp class=\"note\"\u003e **Formel angepasst, standardisiert, um Leistungsparameter zu erfüllen # - Entspricht Rindfleischextrakt\u003c\/p\u003e\n\n\n\u003c\/div\u003e\n\n\u003cdiv class=\"section\"\u003e\n\n\u003ch3\u003e Wegbeschreibung\u003c\/h3\u003e\n\n \u003cp\u003e63,0 g in 950 ml gereinigtem\/destilliertem Wasser suspendieren. Zum vollständigen Auflösen des Mediums erhitzen. 15 Minuten bei 15 psi (121 °C) autoklavieren. Auf 50 °C abkühlen lassen und aseptisch 50 ml konzentrierte Eigelbemulsion (FD045) und 3 ml steriles PTe 3,5 % Selektivzusatz (1 ml pro Durchstechflasche) (FD047) oder 50 ml Eigelb-Tel-Emulsion (100 ml pro Durchstechflasche) (FD046) zugeben. Zur Erhöhung der Selektivität kann bei Bedarf der rehydrierte Inhalt einer Durchstechflasche BP S Selektivzusatz (FD069) hinzugefügt werden. Alternativ kann zur Identifizierung von koagulasepositiven Staphylokokken eine Durchstechflasche FPT-Inhibitor (FD195) pro 90 ml Medium anstelle von Eigelb-Tel-Emulsion (100 ml pro Durchstechflasche) (FD046) verwendet werden. Gut mischen und in sterile Petrischalen gießen.\u003c\/p\u003e\n\n\n\u003c\/div\u003e\n\n\u003cdiv class=\"section\"\u003e\n\n\u003ch3\u003e Prinzip und Auslegung\u003c\/h3\u003e\n\n \u003cp\u003eBaird-Parker-Agar wurde von Baird Parker (1,2) auf Basis der Tellurit-Glycin-Formulierung von Zebovitz et al. (3) zur Isolierung und Zählung von Staphylokokken in Lebensmitteln und anderen Materialien entwickelt, da er eine gute Differenzierung koagulasepositiver Stämme ermöglicht. Es wurde eine hohe Korrelation zwischen dem Koagulasetest und dem Auftreten einer klaren Lipolysezone in diesem Medium festgestellt, die auf die Lecithinase der Staphylokokken zurückzuführen ist, welche das Eigelb abbaut. Studien zeigen außerdem, dass nahezu 100 % der koagulasepositiven Staphylokokken Tellurit reduzieren können, was zur Bildung schwarzer Kolonien führt, während dies anderen Staphylokokken nicht immer gelingt. Das Medium erwies sich als weniger hemmend für …\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003e\u003ci\u003eStaphylococcus aureus\u003c\/i\u003e\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003eBaird-Parker-Agar ist selektiver als andere Nährmedien und weist gleichzeitig eine höhere Selektivität auf (4, 5, 6). In der Folge wurde die Verwendung von Baird-Parker-Agar offiziell von AOAC International (7) übernommen und wird in der USP für die Durchführung mikrobiologischer Grenzwerttests empfohlen (8). Kürzlich hat auch das ISO-Komitee dieses Medium zur Isolierung und Zählung von Staphylokokken empfohlen (9).\u003c\/p\u003e\n\n \u003cp\u003eDie Identität von\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003e\u003ci\u003eStaphylococcus aureus\u003c\/i\u003e\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003eAuf Baird-Parker-Agar isolierte Bakterien müssen mittels Koagulase-Reaktion bestätigt werden. Baird-Parker-Agar kann auch zur Bestimmung der Koagulaseaktivität durch Zugabe von Fibrinogenplasma (10) verwendet werden. FPT-Inhibitor (FD195), gelöst in 10 ml sterilem destilliertem Wasser, wird zu 90 ml sterilem, geschmolzenem Medium gegeben, das bei 45–50 °C gehalten wird. Auf diesem Medium erscheinen koagulasepositive Kolonien weiß bis grauschwarz, umgeben von einer undurchsichtigen Zone aufgrund der Koagulaseaktivität. Die Inkubation erfolgt innerhalb von 24–48 Stunden bei 35 °C. Die Reduktion von Tellurit ist aufgrund des Fehlens von Eigelbemulsion notwendig. Dies führt zu durchscheinendem Agar und weiß bis grau gefärbten Staphylokokkenkolonien. Für quantitative Ergebnisse werden 20–200 Kolonien ausgewählt und ausgezählt.\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003e\u003ci\u003eStaphylococcus aureus\u003c\/i\u003e\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003eKolonien wie diese auf Koagulasereaktion testen. Bericht\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003e\u003ci\u003eStaphylococcus aureus\u003c\/i\u003e\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003epro Gramm Futter. Smith und Baird-Parker (11) stellten fest, dass die Zugabe von 50 mg\/l Sulfamethazin zum Medium das Wachstum und das Schwärmen von\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003e\u003ci\u003eProteus\u003c\/i\u003e\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003eSpezies.\u003c\/p\u003e\n\n \u003cp\u003eTrypton, HM-Pepton B und Hefeextrakt sind Quellen für Stickstoff, Kohlenstoff, Schwefel und Vitamine. Natriumpyruvat schützt nicht nur geschädigte Zellen und fördert die Regeneration, sondern stimuliert auch …\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003e\u003ci\u003eStaphylococcus aureus\u003c\/i\u003e\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003eWachstum ohne Beeinträchtigung der Selektivität. Lithiumchlorid und Kaliumtellurit hemmen die meisten kontaminierenden Mikroorganismen, außer\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003e\u003ci\u003eStaphylococcus aureus\u003c\/i\u003e . Der Telluritzusatz ist für andere Eigelb-auflösende Stämme als Staphylococcus aureus toxisch.\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003e\u003ci\u003eS. aureus\u003c\/i\u003e\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003eund verleiht den Kolonien eine schwarze Farbe.\u003c\/p\u003e\n\n \u003cp\u003eGlycin und Pyruvat fördern das Wachstum von\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003e\u003ci\u003eStaphylokokken\u003c\/i\u003e . Durch Zugabe von Eigelb färbt sich das Medium gelb und wird undurchsichtig. Das Eigelb dient nicht nur der Anreicherung, sondern unterstützt auch die Identifizierung durch den Nachweis von Lecithinaseaktivität (Eigelbreaktion). Eine klare Zone und grauschwarze Kolonien auf diesem Medium sind diagnostisch für koagulasepositive Staphylokokken. Bei weiterer Inkubation bildet sich um die Kolonien eine undurchsichtige Zone, die auf lipolytische Aktivität zurückzuführen sein kann. Zur Prüfung des Mediums wird das zu untersuchende Material (0,1 ml pro Petrischale mit 90–100 mm Durchmesser) beimpft, bei 37 °C inkubiert und nach 24–26 Stunden abgelesen. Die Kolonien von\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003e\u003ci\u003eStaphylococcus aureus\u003c\/i\u003e\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003eDie Kolonien sind schwarz und glänzend mit einem feinen weißen Rand, umgeben von einer klaren Zone. Nach weiteren 24 Stunden Inkubation bei 37 °C wird der Koagulasetest an den Kolonien mit den oben genannten Merkmalen durchgeführt, die sich während dieser Inkubationszeit entwickelt haben. Die Platten sollten am selben Tag der Präparation oder innerhalb von 48 Stunden verwendet werden, um ein Verschwimmen der Präzipitationszonen zu vermeiden. Das Basalmedium ohne Eigelb und Tellurit ist vollkommen stabil. Kolonien einiger kontaminierender Organismen können die Koagulase-Halo-Reaktion verdauen. Andere Bakterien können auf diesem Medium wachsen, jedoch kann der biochemische Test koagulasepositive Staphylokokken von anderen Organismen unterscheiden.\u003c\/p\u003e\n\n\n\u003c\/div\u003e\n\n\u003cdiv class=\"section\"\u003e\n\n \u003ch3\u003eArt der Probe\u003c\/h3\u003e\n\n\u003cp\u003e Klinische Proben: Eiter, Wunden, Lebensmittel- und Milchproben\u003c\/p\u003e\n\n\n\u003c\/div\u003e\n\n\u003cdiv class=\"section\"\u003e\n\n\u003ch3\u003e Probenentnahme und -behandlung\u003c\/h3\u003e\n\n\u003cp\u003e Bei Lebensmittel- und Milchproben sind die in den Richtlinien (12, 13, 14) beschriebenen Verfahren zur Probenentnahme und -verarbeitung anzuwenden. Bei klinischen Proben sind die in den etablierten Richtlinien (15, 16) beschriebenen Verfahren zur Probenhandhabung zu befolgen. Kontaminierte Materialien müssen nach Gebrauch durch Autoklavieren sterilisiert und anschließend entsorgt werden.\u003c\/p\u003e\n\n\n\u003c\/div\u003e\n\n\u003cdiv class=\"section\"\u003e\n\n\u003ch3\u003e Warnung und Vorsichtsmaßnahmen\u003c\/h3\u003e\n\n\u003cp\u003e Zur In-vitro-Diagnostik. Nur für den professionellen Gebrauch. Vor dem Öffnen des Behälters das Etikett lesen. Schutzhandschuhe\/Schutzkleidung\/Augenschutz\/Gesichtsschutz tragen. Bei der Handhabung von Proben und Kulturen die üblichen mikrobiologischen Laborpraktiken beachten. Beim Umgang mit klinischen Proben sind die Standardvorkehrungen gemäß den geltenden Richtlinien zu treffen. Sicherheitshinweise finden Sie in den jeweiligen Sicherheitsdatenblättern.\u003c\/p\u003e\n\n\n\u003c\/div\u003e\n\n\u003cdiv class=\"section\"\u003e\n\n\u003ch3\u003e Einschränkungen\u003c\/h3\u003e\n\n\u003col\u003e\n\n\u003cli\u003e Obwohl das Medium zur Erkennung von Koagulase-positiven Proben empfohlen wird\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003e\u003ci\u003eNeben Staphylococcus aureus\u003c\/i\u003e können sich auch andere Bakterien vermehren.\u003c\/li\u003e\n\n \u003cli\u003eEinzelne Organismen unterscheiden sich in ihren Wachstumsansprüchen und können auf dem Nährmedium unterschiedliche Wachstumsmuster aufweisen.\u003c\/li\u003e\n\n\u003cli\u003e Jede Charge des Mediums wurde mit den Standardstämmen getestet; je nach Herkunft des Organismus können geringfügige Abweichungen im Wachstum auftreten.\u003c\/li\u003e\n\n\n\u003c\/ol\u003e\n\n\n\u003c\/div\u003e\n\n\u003cdiv class=\"section\"\u003e\n\n\u003ch3\u003e Leistung und Bewertung\u003c\/h3\u003e\n\n\u003cp\u003e Die Leistungsfähigkeit des Mediums ist zu erwarten, wenn es gemäß den Anweisungen auf dem Etikett innerhalb des Verfallsdatums verwendet und bei der empfohlenen Temperatur gelagert wird.\u003c\/p\u003e\n\n\n\u003c\/div\u003e\n\n\u003cdiv class=\"section\"\u003e\n\n\u003ch3\u003e Qualitätskontrolle\u003c\/h3\u003e\n\n\u003cp\u003e \u003cb\u003eAussehen\u003c\/b\u003e\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003eCremefarbenes bis gelbes, homogenes, rieselfähiges Pulver\u003c\/p\u003e\n\n\u003cp\u003e \u003cb\u003eGelierung\u003c\/b\u003e\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003eFest, vergleichbar mit 2,0%igem Agar-Gel.\u003c\/p\u003e\n\n\u003cp\u003e \u003cb\u003eFarbe und Klarheit des zubereiteten Mediums\u003c\/b\u003e\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003eBasalmedium: Gelbliches, klares bis leicht trübes Gel. Nach Zugabe von Eigelbemulsion und Telluritemulsion: Gelbliches, opakes Gel in Petrischalen.\u003c\/p\u003e\n\n\u003cp\u003e \u003cb\u003eReaktion\u003c\/b\u003e\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003eReaktion einer 6,3 % (w\/v) wässrigen Lösung bei 25 °C. pH-Wert: 7,0 ± 0,2\u003c\/p\u003e\n\n\u003cp\u003e \u003cb\u003epH\u003c\/b\u003e\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003e6,80-7,20\u003c\/p\u003e\n\n\n\u003c\/div\u003e\n\n\u003cdiv class=\"section\"\u003e\n\n\u003ch3\u003e Kulturelle Reaktion\u003c\/h3\u003e\n\n \u003cp\u003eEine kulturelle Reaktion wurde nach einer Inkubation bei 35–37 °C über 24–48 Stunden beobachtet. Die Erholungsrate für das Bakterienwachstum auf Sojabohnen-Casein-Digest-Agar wird mit 100 % angenommen.\u003c\/p\u003e\n\n\u003ctable\u003e\n\n\u003ctbody\u003e\n\n\u003ctr\u003e\n\n\u003cth\u003e Organismus\u003c\/th\u003e\n\n\u003cth\u003e Inokulum (KBE)\u003c\/th\u003e\n\n\u003cth\u003e Wachstum\u003c\/th\u003e\n\n\u003cth\u003e Erholung\u003c\/th\u003e\n\n\u003cth\u003e Farbe der Kolonie\u003c\/th\u003e\n\n\u003cth\u003e Lecithinase\u003c\/th\u003e\n\n\n\u003c\/tr\u003e\n\n\u003ctr\u003e\n\n\u003ctd\u003e\n\n \u003ci\u003eStaphylococcus aureus\u003c\/i\u003e\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003eUnterart.\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003e\u003ci\u003eaureus\u003c\/i\u003e\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003eATCC 6538 (00032*)\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e 50-100\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e üppig\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e \u0026gt;=50%\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e grau-schwarz glänzend\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e Positive, undurchsichtige Zone um die Kolonie\u003c\/td\u003e\n\n\n\u003c\/tr\u003e\n\n\u003ctr\u003e\n\n\u003ctd\u003e\n\n \u003ci\u003eStaphylococcus aureus\u003c\/i\u003e\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003eUnterart.\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003e\u003ci\u003eaureus\u003c\/i\u003e\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003eATCC 25923 (00034*)\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e 50-100\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e üppig\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e \u0026gt;=50%\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e grau-schwarz glänzend\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e Positive, undurchsichtige Zone um die Kolonie\u003c\/td\u003e\n\n\n\u003c\/tr\u003e\n\n\u003ctr\u003e\n\n\u003ctd\u003e\n\n \u003ci\u003eProteus mirabilis\u003c\/i\u003e\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003eATCC 25933\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e 50-100\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e gut - üppig\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e \u0026gt;=50%\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e braun - schwarz\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e Negativ\u003c\/td\u003e\n\n\n\u003c\/tr\u003e\n\n\u003ctr\u003e\n\n\u003ctd\u003e\n\n \u003ci\u003eMicrococcus luteus\u003c\/i\u003e\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003eATCC 10240\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e 50-100\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e schlecht - gut\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e 30-40%\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e Braun-schwarze Farbtöne (sehr klein)\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e Negativ\u003c\/td\u003e\n\n\n\u003c\/tr\u003e\n\n\u003ctr\u003e\n\n\u003ctd\u003e\n\n \u003ci\u003eStaphylococcus epidermidis\u003c\/i\u003e\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003eATCC 12228 (00036*)\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e 50-100\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e mittelmäßig-gut\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e 30-40%\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e Schwarz\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e Negativ\u003c\/td\u003e\n\n\n\u003c\/tr\u003e\n\n\u003ctr\u003e\n\n\u003ctd\u003e **\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003e\u003ci\u003eBacillus spizizenii\u003c\/i\u003e\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003eATCC 6633 (00003*)\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e 50-100\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e keine - schlecht\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e 0-10%\u003c\/td\u003e\n\n \u003ctd\u003edunkelbraun matt\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e Negativ\u003c\/td\u003e\n\n\n\u003c\/tr\u003e\n\n\u003ctr\u003e\n\n\u003ctd\u003e\n\n \u003ci\u003eEscherichia coli\u003c\/i\u003e\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003eATCC 8739 (00012*)\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e 50-100\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e keine - schlecht\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e 0-10%\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e groß braun schwarz\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e Negativ\u003c\/td\u003e\n\n\n\u003c\/tr\u003e\n\n\u003ctr\u003e\n\n\u003ctd\u003e\n\n \u003ci\u003eEscherichia coli\u003c\/i\u003e\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003eATCC 25922 (00013*)\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e 50-100\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e keine - schlecht\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e 0-10%\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e groß braun schwarz\u003c\/td\u003e\n\n\u003ctd\u003e Negativ\u003c\/td\u003e\n\n\n\u003c\/tr\u003e\n\n\n\u003c\/tbody\u003e\n\n\n\u003c\/table\u003e\n\n\u003cp\u003e Legende: *Entsprechende WDCM-Nummern, **Früher bekannt als\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003e\u003ci\u003eBacillus subtilis\u003c\/i\u003e\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003eUnterart.\u003cspan\u003e \u003c\/span\u003e\u003ci\u003espizizenii'\u003c\/i\u003e\u003c\/p\u003e\n\n\n\u003c\/div\u003e\n\n\u003cdiv class=\"section\"\u003e\n\n\u003ch3\u003e Lagerung und Haltbarkeit\u003c\/h3\u003e\n\n\u003cp\u003e Lagern Sie das Produkt in einem dicht verschlossenen Behälter bei 10–30 °C und das zubereitete Medium bei 2–8 °C. Verwenden Sie es vor dem auf dem Etikett angegebenen Verfallsdatum. Nach dem Öffnen sollte das Produkt trocken und gut verschlossen aufbewahrt werden, um Klumpenbildung aufgrund der hygroskopischen Eigenschaften des Produkts zu vermeiden. Unsachgemäße Lagerung kann zu Klumpenbildung führen. Lagern Sie das Produkt an einem trockenen, gut belüfteten Ort, geschützt vor extremen Temperaturen und Zündquellen. Verschließen Sie den Behälter nach Gebrauch wieder fest. Die beste Produktleistung wird erzielt, wenn das Produkt innerhalb des angegebenen Verfallsdatums verwendet wird.\u003c\/p\u003e\n\n\n\u003c\/div\u003e\n\n\u003cdiv class=\"section\"\u003e\n\n\u003ch3\u003e Entsorgung\u003c\/h3\u003e\n\n \u003cp\u003eDer Anwender muss die sichere Entsorgung gebrauchter oder unbrauchbarer Zubereitungen dieses Produkts durch Autoklavieren und\/oder Verbrennen gewährleisten. Bei der Entsorgung infektiöser Materialien sind die etablierten Laborverfahren einzuhalten. Material, das mit klinischen Proben in Kontakt gekommen ist, muss dekontaminiert und gemäß den geltenden Labortechniken entsorgt werden (15, 16).\u003c\/p\u003e\n\n\n\u003c\/div\u003e\n\n\u003cdiv class=\"section\"\u003e\n\n\u003ch3\u003e Referenz\u003c\/h3\u003e\n\n\u003col\u003e\n\n\u003cli\u003e Baird-Parker AC, 1962, J. Appl. Bacteriol., 25:12.\u003c\/li\u003e\n\n\u003cli\u003e Baird-Parker AC und Davenport E., 1965, J. Appl. Bacteriol., 28:390.\u003c\/li\u003e\n\n\u003cli\u003e Zebovitz E., Evans JB und Niven CF, 1955, J. Bacteriol., 70:686.\u003c\/li\u003e\n\n\u003cli\u003e Assoc. off. Anal. Chem., 1971, 54:401.\u003c\/li\u003e\n\n\u003cli\u003e Baer, ​​1971, J. Assoc. Off. Anal. Chem., 54:732.\u003c\/li\u003e\n\n\u003cli\u003e Tardio und Baer, ​​1971, J. Assoc. Off. Anal. Chem., 54:728.\u003c\/li\u003e\n\n\u003cli\u003e Horwitz (Hrsg.), 2000, Offizielle Analysemethoden von AOAC International, 17. Auflage, Band I, AOAC International, Gaithersburg, MD.\u003c\/li\u003e\n\n\u003cli\u003e United States Pharmacopoeia-National Formulatory (USP-NF), 2022.\u003c\/li\u003e\n\n\u003cli\u003e Internationale Organisation für Normung (ISO), 1983, Entwurf ISO\/DIS 6888.\u003c\/li\u003e\n\n\u003cli\u003e Beckers NJ et al, 1984, Can. J. Microbiol., 30:470.\u003c\/li\u003e\n\n \u003cli\u003eSmith BA und Baird-Parker AC, 1964, J. Appl. Bacteriol., 27:78.\u003c\/li\u003e\n\n\u003cli\u003e Salfinger Y. und Tortorello ML, 2015, Kompendium der Methoden zur mikrobiologischen Untersuchung von Lebensmitteln, 5. Auflage, American Public Health Association, Washington, DC\u003c\/li\u003e\n\n\u003cli\u003e Wehr HM und Frank JH, 2004, Standardmethoden für die mikrobiologische Untersuchung von Milchprodukten, 17. Auflage, APHA Inc., Washington, DC\u003c\/li\u003e\n\n\u003cli\u003e American Public Health Association, Standard Methods for the Examination of Dairy Products, 1978, 14. Auflage, Washington.\u003c\/li\u003e\n\n\u003cli\u003e Isenberg, HD Handbuch der klinischen mikrobiologischen Verfahren, 2. Auflage.\u003c\/li\u003e\n\n\u003cli\u003e Jorgensen, JH, Pfaller, MA, Carroll, KC, Funke, G., Landry, ML, Richter, SS und Warnock, DW (2015) Handbuch der klinischen Mikrobiologie, 11. Auflage. Band 1.\u003c\/li\u003e\n\n\n\u003c\/ol\u003e\n\n\u003cp\u003e \u003ca href=\"https:\/\/www.himediadownloads.com\/MSDS\/M043.pdf\" target=\"_blank\" title=\"Baird Parker Agar-Basis\" rel=\"noopener\"\u003e\u003cstrong\u003eSicherheitsdatenblatt (SDB)\u003c\/strong\u003e\u003c\/a\u003e \u003c\/p\u003e\n\n\n\u003c\/div\u003e\n\n\n\u003c\/div\u003e\n\n\n\u003c\/div\u003e\n\n\n\u003c\/div\u003e\n\n\n\u003c\/div\u003e","brand":"Himeida","offers":[{"title":"Default Title","offer_id":48069901156571,"sku":"BP-5110-HIM-HIM-DEF","price":6299.0,"currency_code":"INR","in_stock":true}],"thumbnail_url":"\/\/cdn.shopify.com\/s\/files\/1\/0796\/6942\/8443\/files\/m043-500g.png?v=1766219341","url":"https:\/\/zayyuconnect.com\/de\/products\/himedia-baird-parker-agar-base-m043-500g","provider":"Zayyu Connect","version":"1.0","type":"link"}