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HiMedia - MacConkey Broth Purple mit BCP (M083-500G)

HiMedia - MacConkey Broth Purple mit BCP (M083-500G)

Normaler Preis Rs. 4,369.00
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Zur vorläufigen Identifizierung von Coliformen aus verschiedenen Proben wie Wasser, Milch, Lebensmitteln und klinischen Proben.

Verwendungszweck

Empfohlen zur vorläufigen Identifizierung von Coliformen aus verschiedenen Proben wie Wasser, Milch, Lebensmitteln und klinischen Proben.

Zusammensetzung**

Zutaten Gramm/Liter
Pepton 20.000
Laktose 10.000
Natriumtaurocholat 5.000
Natriumchlorid 5.000
Bromkresolpurpur 0,010
End-pH-Wert (bei 25 °C) 7,4 ± 0,2

Die Formel wurde an die Leistungsparameter angepasst und standardisiert.

Wegbeschreibung

40,01 g in 1000 ml gereinigtem/destilliertem Wasser suspendieren. Bei Bedarf erwärmen, um das Medium aufzulösen, und in Reagenzgläser mit umgedrehten Durham-Röhrchen verteilen. 15 Minuten bei 15 psi (121 °C) im Autoklaven sterilisieren.

Prinzip und Auslegung

MacConkey-Bouillon Purple mit BCP ist eine Modifikation des MacConkey-Mediums (1). Childs und Allen (2) wiesen die hemmende Wirkung von Neutralrot nach und ersetzten es daher durch den weniger hemmenden Farbstoff Bromkresolpurpur. BCP reagiert empfindlicher auf pH-Wert-Änderungen im Medium. Pepton liefert stickstoff- und kohlenstoffhaltige Verbindungen, langkettige Aminosäuren und weitere essentielle Nährstoffe für das Wachstum. Laktose ist das fermentierbare Kohlenhydrat. Natriumtaurocholat hemmt grampositive Organismen. Natriumchlorid erhält das osmotische Gleichgewicht des Mediums aufrecht. Bromkresolpurpur ist der pH-Indikator im Medium und färbt sich unter sauren Bedingungen gelb. Die Laktosefermentation führt aufgrund der dabei entstehenden Säure zu einer Gelbfärbung des Mediums. Der Farbumschlag des Farbstoffs ist zu beobachten, wenn der pH-Wert des Mediums unter 6,8 sinkt. Laktose-nicht-fermentierende Organismen wie Salmonellen Und Shigella Das Erscheinungsbild des Mediums darf nicht verändert werden.

Flüssige Proben werden direkt beimpft, während feste Proben in geeigneten Verdünnungsmitteln wie physiologischer Kochsalzlösung, Phosphatpuffern usw. homogenisiert werden müssen. Die Beimpfung erfolgt mit einer Konzentration von 10 % (v/v) in Durham-Röhrchen. Bei einem Inokulum von mehr als 1 ml ist das Medium in doppelter Konzentration zu verwenden, wobei gleiche Volumina von Probe und Medium beimpft werden.

Art der Probe

Lebensmittel- und Milchproben; Wasserproben.

Probenentnahme und -behandlung:

Bei Lebensmittel- und Milchproben sind die in den Richtlinien (3, 4, 5) beschriebenen Verfahren zur Probenahme und -verarbeitung anzuwenden. Bei Wasserproben sind die in den Richtlinien und lokalen Normen (6) beschriebenen Verfahren zur Probenahme und -verarbeitung anzuwenden. Kontaminierte Materialien müssen nach Gebrauch vor der Entsorgung im Autoklaven sterilisiert werden.

Warnung und Vorsichtsmaßnahmen

Lesen Sie vor dem Öffnen des Behälters das Etikett. Tragen Sie Schutzhandschuhe/Schutzkleidung/Augenschutz/Gesichtsschutz. Beachten Sie beim Umgang mit Proben und Kulturen die üblichen mikrobiologischen Laborpraktiken. Beim Umgang mit klinischen Proben sind die Standardvorkehrungen gemäß den geltenden Richtlinien zu treffen. Sicherheitshinweise finden Sie in den jeweiligen Sicherheitsdatenblättern.

Einschränkungen:

  1. Dieses Medium ist ein Universalmedium und unterstützt möglicherweise nicht das Wachstum anspruchsvoller Organismen.
  2. Zur Bestätigung müssen weitere biochemische und serologische Tests durchgeführt werden.

Leistung und Bewertung

Die Leistungsfähigkeit des Mediums ist zu erwarten, wenn es gemäß den Anweisungen auf dem Etikett innerhalb des Verfallsdatums verwendet und bei der empfohlenen Temperatur gelagert wird.

Qualitätskontrolle

Aussehen Cremefarbenes bis gelbes, homogenes, rieselfähiges Pulver

Farbe und Klarheit des zubereiteten Mediums Violette, klare bis leicht trübe Lösung in Röhrchen

Reaktion Reaktion einer 4,0 % (w/v) wässrigen Lösung bei 25 °C. pH: -7,4 ± 0,2

pH 7,20-7,60

Kulturelle Reaktion Kulturelle Merkmale, die nach einer Inkubation bei 35-37°C über 18-24 Stunden beobachtet wurden.

Organismus Inokulum (KBE) Wachstum Säureproduktion Gasproduktion
# Klebsiella aerogenes ATCC 13048 (00175*) 50-100 üppig positive Reaktion, gelbe Farbe positive Reaktion
Escherichia coli ATCC 25922 (00013*) 50-100 üppig positive Reaktion, gelbe Farbe positive Reaktion
Salmonella Choleraesuis ATCC 1011 50-100 mittelmäßig-gut negative Reaktion negative Reaktion
Staphylococcus aureus Unterart. aureus ATCC 25923(00034*) >=10 4 gehemmt
Escherichia coli ATCC 8739 (00012*) 50-100 üppig positive Reaktion, gelbe Farbe positive Reaktion
Escherichia coli NCTC 9002 50-100 üppig positive Reaktion, gelbe Farbe positive Reaktion
Staphylococcus aureus Unterart. aureus ATCC 6538 (00032*) >=10 4 gehemmt

Legende: *Zugehörige WDCM-Nummern. # Früher bekannt als Enterobacter aerogenes

Lagerung und Haltbarkeit

Lagern Sie das Produkt in einem dicht verschlossenen Behälter bei 10–30 °C und das zubereitete Medium bei 20–30 °C. Verwenden Sie das Produkt vor dem auf dem Etikett angegebenen Verfallsdatum. Nach dem Öffnen sollte das Produkt trocken und gut verschlossen aufbewahrt werden, um Klumpenbildung aufgrund der hygroskopischen Eigenschaften des Produkts zu vermeiden. Unsachgemäße Lagerung kann zu Klumpenbildung führen. Lagern Sie das Produkt an einem trockenen, gut belüfteten Ort, geschützt vor extremen Temperaturen und Zündquellen. Verschließen Sie den Behälter nach Gebrauch fest. Verwenden Sie das Produkt vor dem auf dem Etikett angegebenen Verfallsdatum. Die beste Produktleistung wird erzielt, wenn das Produkt innerhalb des angegebenen Verfallsdatums verwendet wird.

Entsorgung

Der Anwender muss die sichere Entsorgung gebrauchter oder unbrauchbarer Zubereitungen dieses Produkts durch Autoklavieren und/oder Verbrennen gewährleisten. Bei der Entsorgung infektiöser Materialien sind die etablierten Laborverfahren einzuhalten. Material, das mit der Probe in Kontakt gekommen ist, muss dekontaminiert und gemäß den geltenden Labortechniken entsorgt werden (7,8).

Referenz

  1. MacConkey AT, 1900, The Lancet, ii: 20.
  2. Childs E. und Allen, 1953, J. Hyg: Camb. 51:468-477
  3. Amerikanische Vereinigung für öffentliche Gesundheit, Standardmethoden zur Untersuchung von Milchprodukten, 1978, 14. Auflage, Washington DC
  4. Salfinger Y. und Tortorello ML (Hrsg.), 2015, Kompendium der Methoden zur mikrobiologischen Untersuchung von Lebensmitteln, 5. Auflage, American Public Health Association, Washington, DC
  5. Wehr HM und Frank JH, 2004, Standardmethoden für die mikrobiologische Untersuchung von Milchprodukten, 17. Auflage, APHA Inc., Washington, DC
  6. Baird RB, Eaton AD und Rice EW (Hrsg.), 2015, Standardmethoden zur Untersuchung von Wasser und Abwasser, 23. Auflage, APHA, Washington, DC
  7. Isenberg, HD Handbuch der klinischen mikrobiologischen Verfahren. 2. Auflage.
  8. Jorgensen, JH, Pfaller, MA, Carroll, KC, Funke, G., Landry, ML, Richter, SS und Warnock, DW (2015) Handbuch der klinischen Mikrobiologie, 11. Auflage. Band 1.

Sicherheitsdatenblatt (SDB)

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