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HiMedia - Sojabohnen-Casein-Digest-Medium (Trypton-Soja-Bouillon) (M011)

HiMedia - Sojabohnen-Casein-Digest-Medium (Trypton-Soja-Bouillon) (M011)

Normaler Preis Rs. 569.00
Normaler Preis Verkaufspreis Rs. 569.00
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Empfohlen als universelles Nährmedium für die Kultivierung einer Vielzahl von Mikroorganismen und empfohlen für Sterilitätstests von Schimmelpilzen und niederen Bakterien.

Bestimmungsgemäße Verwendung

Empfohlen als universelles Nährmedium für die Kultivierung einer Vielzahl von Mikroorganismen und empfohlen für Sterilitätstests von Schimmelpilzen und niederen Bakterien.

Zusammensetzung**

Zutaten g/L
Trypton 17.000
Sojapepton 3.000
Natriumchlorid 5.000
Dextrose (Glucose) 2.500
Dikaliumhydrogenphosphat 2.500

End-pH-Wert (bei 25 °C): 7,3 ± 0,2

Die Formel wurde an die Leistungsparameter angepasst und standardisiert.

Wegbeschreibung

30,0 g in 1000 ml gereinigtem/destilliertem Wasser suspendieren. Bei Bedarf erwärmen, um das Medium vollständig aufzulösen. Gut mischen und nach Bedarf in Röhrchen oder Kolben abfüllen. 15 Minuten bei 15 psi (121 °C) im Autoklaven sterilisieren.

Hinweis: Falls Fasern in der Lösung beobachtet werden, wird empfohlen, die Lösung durch einen 0,22-Mikron-Filter zu filtrieren, um die Möglichkeit des Vorhandenseins von Fasern auszuschließen.

Prinzip und Auslegung

Sojabohnen-Casein-Digest-Medium wird von verschiedenen Arzneibüchern als Sterilitäts- und mikrobiologisches Grenzwertmedium empfohlen (1,2,3). Dieses Medium ist ein sehr nährstoffreiches Medium, das zur Kultivierung einer Vielzahl von Organismen verwendet wird (4).

Die Kombination aus Trypton und Sojapepton macht das Medium nährstoffreich, indem sie stickstoffhaltige und kohlenstoffhaltige Substanzen, Aminosäuren und langkettige Peptide für das Wachstum von Mikroorganismen bereitstellt. Dextrose/Glucose dienen als Kohlenhydratquelle, und Dikaliumphosphat puffert das Medium. Natriumchlorid erhält das osmotische Gleichgewicht des Mediums aufrecht.

Art der Probe

Pharmazeutische Proben, klinische Proben – Urin-, Eiter- und Wundproben.

Probenentnahme und -behandlung

Bei klinischen Proben sind die für den Umgang mit Proben geeigneten Techniken gemäß den festgelegten Richtlinien zu befolgen (5,6).

Bei pharmazeutischen Proben sind die entsprechenden Verfahren zur Probenentnahme und -verarbeitung gemäß den pharmazeutischen Richtlinien (2) anzuwenden. Kontaminierte Materialien müssen nach Gebrauch vor der Entsorgung durch Autoklavieren sterilisiert werden.

Warnung und Vorsichtsmaßnahmen

Zur In-vitro-Diagnostik. Nur für den professionellen Gebrauch. Lesen Sie vor dem Öffnen des Behälters das Etikett. Tragen Sie Schutzhandschuhe/Schutzkleidung/Augenschutz/Gesichtsschutz. Beachten Sie beim Umgang mit Proben und Kulturen die üblichen mikrobiologischen Laborpraktiken. Beim Umgang mit klinischen Proben sind die Standardvorkehrungen gemäß den geltenden Richtlinien zu treffen. Sicherheitshinweise finden Sie in den jeweiligen Sicherheitsdatenblättern.

Einschränkungen

  1. Zur weiteren Identifizierung ist eine biochemische Charakterisierung der Kolonien aus Reinkulturen erforderlich.
  2. Dieses Medium ist ein Universalmedium und unterstützt möglicherweise nicht das Wachstum anspruchsvoller Organismen.

Leistung und Bewertung

Die Leistungsfähigkeit des Mediums ist zu erwarten, wenn es gemäß den Anweisungen auf dem Etikett innerhalb des Verfallsdatums verwendet und bei der empfohlenen Temperatur gelagert wird.

Qualitätskontrolle

Aussehen: Cremefarbenes bis gelbes, homogenes, rieselfähiges Pulver

Farbe und Klarheit des vorbereiteten Mediums: Hellgelbe, klare Lösung ohne Niederschlag.

Reaktion: pH-Wert einer 3,0 % (w/v) wässrigen Lösung bei 25 °C (nach Sterilisation). pH-Wert: 7,3 ± 0,2

pH-Wert: 7.10-7.50

Stabilitätstest: Hellgelbe, klare Lösung ohne Ausfällung oder Sedimentation bei Raumtemperatur über 7 Tage

Wachstumsfördernde Eigenschaften

Bei der angegebenen Temperatur und innerhalb der kürzesten angegebenen Zeitspanne ist ein deutlich sichtbares Wachstum von Mikroorganismen zu beobachten, das mit dem Wachstum vergleichbar ist, das zuvor mit einer zuvor getesteten und zugelassenen Charge des Mediums erzielt wurde. Dabei werden nicht mehr als 100 KBE beimpft (bei 30-35 °C für 18-24 Stunden für Bakterien und 5 Tage für Pilze). Die Wachstumsförderung erfolgt gemäß USP/EP/BP/JP/IP.

Organismus Inokulum (KBE) Wachstum Inkubationstemperatur Inkubationszeitraum
Salmonellen Typhimurium ATCC 14028 (00031*) 50-100 üppig 30-35 °C 18-24 Stunden
Salmonellen Abony NCTC 6017 (00029*) 50-100 üppig 30-35 °C 18-24 Stunden
^ Pseudomonas paraeruginosa ATCC 9027 (00026*) 50-100 üppig 30-35 °C 18-24 Stunden
Staphylokokken aureus Unterart. aureus ATCC 6538 (00032*) 50-100 üppig 30-35 °C 18-24 Stunden
Escherichia coli ATCC 25922 (00013*) 50-100 üppig 30-35 °C 18-24 Stunden
Escherichia coli ATCC 8739 (00012*) 50-100 üppig 30-35 °C 18-24 Stunden
** Bazillus Spizizenii ATCC 6633 (00003*) 50-100 üppig 30-35 °C 18-24 Stunden
$ Kocuria Rhizophila ATCC 9341 50-100 üppig 30-35 °C 18-24 Stunden
Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853 (00025*) 50-100 üppig 30-35 °C 18-24 Stunden
Candida albicans ATCC 10231 (00054*) 50-100 üppig 20-25 °C <=5 d
Staphylokokken aureus Unterart. aureus ATCC 25923 (00034*) 50-100 üppig 30-35 °C 18-24 Stunden
Sterilitätstest – Wachstumsförderung + Validierung
Staphylokokken aureus Unterart. aureus ATCC 6538 (00032*) 50-100 üppig 20-25 °C <=3 d
# Aspergillus brasiliensis ATCC 16404 (00053*) 50-100 üppig 20-25 °C <=5 d
Candida albicans ATCC 2091 (00055*) 50-100 üppig 30-35 °C <=5 d
Staphylokokken aureus Unterart. aureus ATCC 25923 (00034*) 50-100 üppig 20-25 °C <=3 d
Escherichia coli ATCC 25922 (00013*) 50-100 üppig 20-25 °C <=3 d
^ Pseudomonas paraeruginosa ATCC 9027 (00026*) 50-100 üppig 20-25 °C <=3 d
** Bazillus Spizizenii ATCC 6633 (00003*) 50-100 üppig 20-25 °C <=3 d
Salmonellen Typhimurium ATCC 14028 (00031*) 50-100 üppig 20-25 °C <=3 d
Salmonellen Abony NCTC 6017 (00029*) 50-100 üppig 20-25 °C <=3 d
Escherichia coli ATCC 8739 (00012*) 50-100 üppig 20-25 °C <=3 d
Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853 (00025*) 50-100 üppig 20-25 °C <=3 d
$ Kocuria Rhizophila ATCC 9341 50-100 üppig 20-25 °C <=3 d

Legende: (*) Zugehörige WDCM-Nummern

^ Früher bekannt als Pseudomonas aeruginosa

# Früher bekannt als Aspergillus Niger

Früher bekannt als Bazillus subtilis Unterart. Spizizenii

Früher bekannt als Mikrokokken Gelbkörper

Lagerung und Haltbarkeit

Lagern Sie das Produkt in einem dicht verschlossenen Behälter bei 10–30 °C und das zubereitete Medium bei 15–30 °C. Verwenden Sie das Produkt vor dem auf dem Etikett angegebenen Verfallsdatum. Nach dem Öffnen sollte das Produkt trocken und gut verschlossen aufbewahrt werden, um Klumpenbildung aufgrund der hygroskopischen Eigenschaften des Produkts zu vermeiden. Unsachgemäße Lagerung kann zu Klumpenbildung führen. Lagern Sie das Produkt an einem trockenen, gut belüfteten Ort, geschützt vor extremen Temperaturen und Zündquellen. Verschließen Sie den Behälter nach Gebrauch wieder fest. Die beste Produktleistung wird erzielt, wenn das Produkt innerhalb des angegebenen Verfallsdatums verwendet wird.

Entsorgung

Der Anwender muss die sichere Entsorgung gebrauchter oder unbrauchbarer Zubereitungen dieses Produkts durch Autoklavieren und/oder Verbrennen gewährleisten. Bei der Entsorgung infektiöser Materialien sind die etablierten Laborverfahren einzuhalten. Material, das mit klinischen Proben in Kontakt gekommen ist, muss dekontaminiert und gemäß den geltenden Labortechniken entsorgt werden (5,6).

Referenz

  1. Indisches Arzneibuch, 2022, Kommission für das Indische Arzneibuch, Ministerium für Gesundheit und Familienwohlfahrt, Regierung von Indien.
  2. MacFaddin JF, 1985, Medien zur Isolierung, Kultivierung, Identifizierung und Erhaltung medizinischer Bakterien, Bd. 1, Williams & Wilkins, Baltimore, Md
  3. United States Pharmacopoeia-National Formulatory (USP-NF), 2022.
  4. Forbes BA, Sahm DF und Weissfeld AS, 1998, Bailey & Scotts Diagnostic Microbiology, 10. Auflage, Mosby, Inc. St. Louis, Mo.
  5. Isenberg, HD Handbuch der klinischen mikrobiologischen Verfahren, 2. Auflage.
  6. Jorgensen, JH, Pfaller, MA, Carroll, KC, Funke, G., Landry, ML, Richter, SS und Warnock, DW (2015) Handbuch der klinischen Mikrobiologie, 11. Auflage. Band 1.

Sicherheitsdatenblatt (SDB)

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