Zur Kultivierung von Mikroorganismen, die für die Brauindustrie von Bedeutung sind.
Zusammensetzung**
| Zutaten |
Gramm / Liter |
| Peptonisierte Milch |
15.000 |
| Hefeextrakt |
6.100 |
| Traubenzucker |
16.100 |
| Tomatensaft |
12.200 |
| Dikaliumphosphat |
0,310 |
| Monokaliumphosphat |
0,310 |
| Magnesiumsulfat |
0,120 |
| Natriumchlorid |
0,006 |
| Eisen(II)-sulfat |
0,006 |
| Mangansulfat |
0,006 |
| Agar |
12.000 |
End-pH-Wert (bei 25 °C) 6,3±0,2
Die Formel wurde an die Leistungsparameter angepasst und standardisiert.
Wegbeschreibung
62,158 g in 750 ml destilliertem Wasser suspendieren. Zum Sieden erhitzen, bis sich das Medium vollständig gelöst hat. 250 ml Bier (ohne Entgasung) zum heißen Medium geben und vorsichtig verrühren. Nach Bedarf abfüllen und 10 Minuten bei 15 psi (121 °C) im Autoklaven sterilisieren. Falls erforderlich, vor dem Abfüllen 1 µg/ml Cycloheximid zum sterilen Medium hinzufügen.
Prinzip und Auslegung
Kozulis und Page (1) entwickelten das Universal Beer Agar Medium, ein Basismedium, dem Bier zugesetzt wird. Dieses Medium, das zum Nachweis mikrobieller Kontaminationen verwendet wird, weist Bedingungen auf, die typischerweise in Brauereiprodukten vorkommen, und fördert somit das Wachstum der meisten Varianten von Milchsäurebakterien.
Universal Beer Agar unterstützt das Wachstum von Laktobazillen, Pediokokken, Acetobacter, Lymomonas-Arten und Wildhefestämmen, die die Anstellhefe, die abgekühlte Würze oder während der Gärung oder Lagerung des fertigen Bieres infizieren können.
Aufgrund des enthaltenen Bieres werden in diesen Medien selektiv Mikroorganismen gefördert, die sich an die Bedingungen in der Brauerei angepasst haben. Hopfenbestandteile und Alkohol hemmen das Wachstum vieler luftgetragener Mikroorganismen, die nicht an diese Umgebung angepasst sind (2). Hefeextrakt liefert Spurenelemente, Vitamine und Aminosäuren. Peptonisierte Milch enthält Laktose als Energielieferant. Tomatensaft liefert Kohlenstoff, Proteine und Nährstoffe. Dextrose liefert zusätzlichen Kohlenstoff. Dikalium- und Monokaliumphosphate wirken als Puffer. Magnesiumsulfat, Eisensulfat und Mangansulfat liefern Ionen, die den Stoffwechsel anregen. Natriumchlorid erhält das osmotische Gleichgewicht aufrecht.
Das Vorhandensein von Verderbniserregern in Anzuchthefe kann anhand verdünnter Proben durch direkte Oberflächenplattierung oder durch Ausgussverfahren nachgewiesen werden. Die Platten werden aerob und anaerob inkubiert.
Qualitätskontrolle
Aussehen
Cremefarbenes bis gelbes, homogenes, rieselfähiges Pulver
Gelierung
Fest, vergleichbar mit 1,2%igem Agar-Gel.
Farbe und Klarheit des zubereiteten Mediums
In Petrischalen bildet sich ein mittelbernsteinfarbenes, klares bis leicht trübes Gel.
Reaktion
Reaktion einer 6,22 % (w/v) wässrigen Lösung bei 25 °C. pH-Wert: 6,3 ± 0,2
pH 6,10-6,50
Kulturelle Reaktion
M415: Kulturelle Eigenschaften, die nach einer Inkubation bei 35-37°C für 40-48 Stunden mit Zusatz von Cycloheximid beobachtet wurden.
| Organismus |
Inokulum (KBE) |
Wachstum |
Erholung |
| Acinetobacter calcoaceticus ATCC 23055 |
50-100 |
gut-üppig |
>=50% |
| Lactobacillus acidophilus ATCC 4356 |
50-100 |
gut-üppig |
>=50% |
| Lactobacillus fermentum ATCC 9338 |
50-100 |
gut-üppig |
>=50% |
| Proteus vulgaris ATCC 13315 |
50-100 |
mittelmäßig-gut |
30-40% |
| Pediococcus acidilacti ATCC 8081 |
50-100 |
Gut-üppig |
>=50% |
| Lactobacillus johnsonii ATCC 11506 |
50-100 |
Gut-üppig |
>=50% |
Lagerung und Haltbarkeit
In einem dicht verschlossenen Behälter unter 30 °C lagern, das zubereitete Medium bei 2–8 °C aufbewahren. Vor Ablauf des auf dem Etikett angegebenen Verfallsdatums verwenden.
Referenz
- Kozulis JA und Page HE, 1968, Proc. Am. Soc. Brew. Chem., 52:58.
- MacFaddin J., 1985, Medien zur Isolierung, Kultivierung, Identifizierung und Erhaltung medizinischer Bakterien, Band 1, Williams and Wilkins, Baltimore.
Sicherheitsdatenblatt (SDB)
